FL6000Misuratore di fluorescenza clorofilica doppio modulatore

FL6000Il fluorescente clorofilico doppiomodulare è l'ultima versione aggiornata del fluorescente clorofilico doppiomodulare FL3500, un potente strumento di ricerca per lo studio approfondito dei meccanismi per la fotosintesi di microalghe, clorofili o sospensioni di cisti come le alghe blu-verde o le alghe verdi. Lo strumento dispone di controllo di misura a doppio canale per controllare la temperatura del campione di misura e è dotato di luce a volto singolo (STF), con una varietà di programmi di misura che l'utente può modificare da solo e può effettuare una varietà di studi approfonditi internazionali sulla fluorescenza clorofilica. La sua struttura centrale è costituita da una testa di misura ottica che contiene una coppa di campione standard per la sospensione, 3 gruppi integrati di fonti luminose a LED e un rilevatore di segnale a diodo PIN a 1MHz/16 bit di conversione AD. I guadagni e i tempi di credito della conversione AD possono essere controllati tramite il software. Il rilevatore misura il segnale fluorescente della clorofila con una risoluzione temporale fino a 4 µs (versione rapida di 1 µs).

Applicazioni:

·Proprietà della fotosintesi vegetale e screening dei disturbi metabolici

·Rilevamento della coercizione biologica e non biologica

·Studi sulla resistenza alla coercizione o sulla sensibilità delle piante

·Studi sul caos metabolico

·Ricerca sul meccanismo di funzionamento del sistema fotosintetico

·Strategie di ricerca sulla fotofisiologia delle piante forzate

Tipico campione:

·Alghe blu (batteri blu)

·Alghe verdi

·Sospensioni cloroformi

·Sospensioni cistiche

·Fragmenti vegetali

Caratteristiche:

·La misurazione indotta dalla fluorescenza clorofilica integrata, la misurazione PAM (modulazione degli impulsi), la misurazione dinamica della fluorescenza rapida OJIP, la dinamica della riossidazione QA, la conversione dello stato S, l'estinzione della fluorescenza clorofilica, ecc. sono i programmi di misurazione più completi al mondo.

·Tecnologia di doppia modulazione per misurare la luce a doppio colore, con luce fotochimica modulata e luce fotochimica continua per misurare STF (single-cycle flash), TTF (double-cycle flash) e MTF (multi-cycle flash) e tecnologia FRR personalizzata (Fast Repetition Rate)

·Risoluzione temporale fino a 4 µs in versione standard, versione rapidaFino a 1 µs, il fluorescente clorofilico con la più alta risoluzione temporale attuale

·L'unità di controllo è a doppio canale, il sensore di temperatura può essere collegato per il controllo della temperatura, l'unità di misura dell'ossigeno può essere collegata per la misura della reazione di Hill, ecc.

·Sensibilità estremamente elevata con un limite minimo di rilevamento di 100ng Chla/L

·Colore e intensità della sorgente luminosa monoriflessiva satura, misurazione della luce, illuminazione

·La console è dotata di schermo touch a colori per visualizzare le curve fluorescenti in tempo reale

Parametri tecnici:

·Procedura sperimentale: misurazione dell'effetto indotto dalla fluorescenza della clorofila di Kautsky; PAM (modulazione degli impulsi)Dinamica di estinzione fluorescentemisurazione; misurazione dinamica fluorescente rapida OJIP; QA – dinamica della riossidazione; conversione dello stato S; Induzione rapida della fluorescenza clorofilica

• Parametri di fluorescenza:

uPAMMisura della dinamica dell'estinzione fluorescente: misura la curva della dinamica dell'estinzione fluorescente, calcolabile F₀Fm, Fv e F₀’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETRPiù di 50 parametri di fluorescenza di clorofila;

uOJIPMisura rapida della dinamica della fluorescenza: misura la curva rapida della dinamica della fluorescenza OJIP, calcolabile F₀FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F₀di FV/F₀Fv / Fm, M0, Area, Fix Area, SM, SS, N, Phi_P₀di Psi_₀Il Phi_E₀Il Phi_D₀Phi_Pav, ABS/RC e TR₀/ RC, ed₀/ RCdi₀/ RCPiù di 20 parametri correlati;

uQAQA-Reoxidation Kinetics: misura la curva QA-Reoxidation Kinetics per adattarsi alle rispettive amplitudini (A1, A2, A3) e costanti temporali (T1, T2, T3) della fase rapida, della fase media e della fase lenta della QA-Reoxidation.

uSTest di stato S: misura la curva di decadimento della fluorescenza del test di stato S per il calcolo del sistema di luce inattiva II (PSII)_XNumero di centri di reazione

uFlash Fluorescence Induction (FFL, solo versione rapida): per calcolare l'area effettiva dell'antenna, la connettività dell'antenna, ecc.

uProtocollo personalizzato per l'eterogeneità dell'antenna PSIIαcon PSIIβAnalisi, sezione effettiva dell'antenna PSII (sPSIIMisura di altri parametri (funzione personalizzata opzionale)

uQA– curva dinamica dell’ossidazione eTest dello stato SCurva di decadimento fluorescente (Li，2010）

·Risoluzione temporale (frequenza di campionamento): rilevatore ad alta sensibilità con risoluzione temporale standard di 4 µs e versione rapida di 1 µs

·Limite minimo di rilevamento: versione standard 100ng Chla/L, versione rapida 1μg Chla/L

·Unità di controllo: con display touch a colori per visualizzare in tempo reale le curve fluorescenti

·Camera di misurazione:

o ilMisura del flash: 623nm rosso arancione e 460nm blu, tempo di flash 2-5µs

oFlash saturato a singolo ciclo: intensità massima di luce 170000 µmol (fotoni) / m².s, tempo di flash 20-50 µs

o ilLuce fotochimica continua: intensità luminosa massima 3500 µmol (fotoni) / m².s

oRilevatore di fluorescenza: fotodiodo PIN

o ilADConvertitore: 16 bit

oTubo di prova del campione: superficie del fondo 10 x 10mm, volume 4ml

• Camera di misura personalizzata (opzionale): i colori della luce, del flash saturo e della luce fotochimica (blu, blu, ambra, ecc.) e le bande di rilevamento (ChlA, ChlB) possono essere misurati su misura

• Fonte di luce a infrarossi lontani (opzionale): per misurare F₀Lunghezza d'onda 730 nm

·Modulo di misura dell'ossigeno (opzionale): misura il rilascio di ossigeno dalle alghe

·Controllo della temperatura (opzionale): regolatore TR 6000, intervallo di temperatura 5-60 °C, precisione 0,1 °C

• Mescolazione elettromagnetica (opzionale): per la miscelazione del campione per prevenire la precipitazione del campione, regolabile manualmente o controllabile automaticamente dal software

• Interfaccia di comunicazione: porta seriale RS232/USB

FluorWinSoftware: definizione o creazione di schemi sperimentali, impostazioni di controllo della sorgente luminosa, output dati, elaborazione analitica e visualizzazione grafica

Applicazioni tipiche:

1. I ricercatori Wang Qiang dell'Istituto di biologia acquatica dell'Accademia cinese di scienze hanno dimostrato che la forza dei nitriti ha influenzato in primo luogo il lato recettore PSII di Synechocystis sp. PCC 6803 utilizzando il fluorescitore FL3500 (modello precedente FL6000) e il sistema di rilascio termico delle piante TL (Zhan X, et al, 2017). Lo studio approfondito di questo meccanismo di fotosintesi spesso richiede la combinazione di entrambi gli strumenti.

2.Il ricercatore Pan Rong Liang dell'Istituto di Ecologia e Geografia dello Xinjiang dell'Accademia di Scienze Cinesi e il suo gruppo hanno utilizzato il fluorescitore FL3500 (modello precedente FL6000) per condurre in profondità la tossicità delle alghe in metalli pesanti, sali, composti tossici, erbicidi, pesticidi, antibiotici e altre sostanze nocive nell'ambiente. Grazie alla misurazione rapida della fluorescenza OJIP ad alta risoluzione, QA - dinamica della riossidazione, conversione dello stato S e altri programmi di misurazione della fluorescenza clorofilica esclusivi del FL3500, i meccanismi tossici e i loro impatti ecologici che dannano il sistema di fotosintesi delle alghe a diverse concentrazioni e tempi di trattamento vengono rivelati in modo completo. Attualmente, il gruppo ha utilizzato il FL3500 (modello precedente al FL6000) per pubblicare oltre venti articoli di alto livello su riviste internazionali SCI e riviste nazionali.

Origine: Repubblica Ceca

Riferimenti:

1. Manaa A, et al. 2019. Tolleranza alla salinità della quinoa (Quinoa di ChenopodiumWilld) come valutato dall'ultrastruttura del cloroplasto e dalle prestazioni fotosintetiche. Botanica ambientale e sperimentale 162: 103-114

2. Yu Z, et al. 2019. La sensibilità di Chlamydomonas reinhardtii allo stress del cadmio è associata alla fototassi. Scienze ambientali: processi e impatti 21: 1011-1020

3. Liang Y, et al. 2019. Meccanismi molecolari di acclimatazione e adattamento della temperatura nelle diatomie marine. La rivista ISME, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

4. Orfanidis S, et al. 2019. Risolvere l'eutrofizzazione dei cianobatteri nocivi attraverso la biotecnologia. Scienze Applicate 9(12): 2566

5. Sicora C I, et al. 2019. Regolazione della funzione PSII inCyanotheceATCC 51142 durante un ciclo luce-buio. Ricerca sulla fotosintesi 139(1–3): 461–473

6. Smythers A L, et al. 2019. Caratterizzare l'effetto di Poast suChlorella vulgarisun organismo non bersaglio. Chemosfera 219: 704-712

7. Albanese P, et al. 2018. Modulazione del proteoma tilacoide in piante di piselli coltivate a irradianze diverse: profilazione proteomica quantitativa in unmodello di organismo assistito dall’integrazione dei dati trascrittomici. Il Plant Journal 96(4): 786-800

8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A, et al. 2018. Sistema di induzione e rilassamento della fluorescenza della clorofilla per il monitoraggio continuo della capacità fotosintetica nei fotobioreattori. Il Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693

9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Simulazione della cinetica dell'aumento e del decadimento della fluorescenza della clorofilla e dei cambiamenti di assorbinza correlati a P700 utilizzando un metodo di Monte-Carlo cinetico basato su regole. Ricerca sulla fotosintesi. DOI:10.1007/s11120-018-0564-2

10.Biswas S, Eaton-Rye JJ, et al. 2018. PsbY è necessario per la prevenzione del fotodanno al fotosistema II in un mutante mancante di PsbM diSinecocistisp. PCC 6803. Fotosintesi, 56(1), 200–209.

11.Bonisteel E M, et al. 2018. Le differenze specifiche del ceppo nei tassi di riparazione del fotosistema II nei picocianobatteri correlano alle differenze nei livelli della proteina FtsH e nei modelli di espressione isoforma. PLoS ONE 13(12): e0209115.

12.Fang X, et al. 2018. Risposte trascrittomiche del cianobatterio marinoProchlorococcoai prodotti di lisi virale. Microbiologia ambientale, doi: 10.1101/394122.

13.Kuthanová Trsková E, Belgio E, Yeates A M, et al. 2018. La sensibilità del protone dell'antenna determina la strategia di raccolta della luce fotosintetica, Journal of Experimental Botany 69(18): 4483-4493